BV2细胞培养注意事项

1. 形态不均一

BV2细胞呈半贴壁生长，贴壁部分圆形和多角形细胞同时存在，存在部分悬浮生长的圆形细胞，传代时均可收集培养，换液时将悬浮细胞离心收集后重新接回原瓶，若贴壁细胞较多活性较好时可以不要悬浮的细胞。

2. 生长较快

BV2细胞生长较快，培养基消耗较快，培养时注意密切关注细胞状态，密度较高、培养基有变黄趋势时及时换液避免细胞状态变差；密度到达80%时及时进行传代，以防细胞过度生长。

3. 对pH敏感

BV2对培养基的pH比较敏感，过酸或过碱的培养基都可能导致细胞状态变差甚至不贴壁。因此需要密切注意培养基的颜色变化，冰箱中变紫的培养基应先在CO2培养箱中平衡至恢复红色再使用。

BV2细胞传代方法

1. 准备所需的培养基、胰酶、PBS、离心管、培养瓶以及无菌枪头等；（试剂提预热）

2. 轻轻吸走培养上清，留 2-3mL 培养基轻轻吹打细胞面吹下细胞；

2. 将细胞悬液转移至离心管，900rpm 离心 3-5min，弃上清；

3. 加新的完*培养基轻轻重悬细胞，均匀分到新的培养瓶里；

4. 补足完*培养基，将培养瓶放回培养箱静置培养。

Tips：吹打次数不宜过多，吹打力度保持轻柔，以免机械刺激造成细胞自分化或损伤。

BV2细胞冻存方法

1. 配制程序性冻存液，准备相应数量冻存管并做好标记。

Tips：推荐冻存液配方92%FBS+8%DMSO或92%完*培养基+8%DMSO

2. 先将细胞按传代步骤获得细胞沉淀；

3. 加入适量程序性冻存液轻轻重悬细胞，并将细胞悬液转移至冻存管中；

4. 将冻存管放入程序性冻存盒，放入-80℃冰箱过夜；

5. 转移冻存细胞至液氮保存并登记细胞保存位置。

Tips：

l 液氮保存24h后建议复苏一管检测冻存细胞的活性，若活性合格即可长*保存。

l 程序性冻存液需要配合程序性冻存盒使用，若使用非程序冻存液请按产品说明书处理降温过程。

l T25培养瓶长满通常可冻存2-3管，10cm皿长满通常可冻存3-4管。

l 冻存密度低将导致复苏后细胞状态不佳。

BV2细胞复苏方法

1. 提将水浴锅预热至37℃，培养基复温至室温或37℃，离心机设置好转速；

2. 将细胞从液氮罐中取出，观察管内无液氮的情况下，捏住管盖，将细胞冻存部分浸入水浴锅迅速摇晃，细胞融化至米粒大小冰块时终止水浴，融化过程不超过2min；

Tips：

l 若液氮或冰箱距离细胞房较远，细胞需要放在干冰或冰盒上运送至细胞房。

l 冻存管在液氮长*保存过程中难免渗入液氮，取出细胞时震动不要过大。水浴一定要观察管内是否存在液氮，若有液氮需静置一会待液氮完*蒸发后再水浴。做好防护，避免冻存管炸开导致受伤。

l 水浴时使用一次性PE手套包住冻存管避免直接接触水源，避免污染。

3. 直接将冻存管以离心力150g(约900rpm)左右离心2min，不同离心机具体转速会有差异

4. 离心完成后弃上清，用预热的培养基缓慢加入冻存管，轻柔重悬细胞后接种至培养瓶中，轻轻混匀后放入培养箱；

5. 复苏24小时后观察细胞贴壁情况。

Tips：整个细胞复苏过程在尽可能5-10min内完成。

BV2细胞收货攻略

l 常温细胞

1. 收货后，拆开外包装，用75%酒精消毒T25瓶表面，放37℃培养箱静置4h以上；

2. 吸走大部分培养基并留10-12 mL，显微镜下拍照保存细胞状态照片，观察细胞密度，若细胞密度大于80%即可按比例传代（*传代比例建议1：2），若细胞密度低于70%可以留10-12 mL继续培养至细胞密度80%以上再进行传代培养；

Tips：若收货时发现悬浮细胞较多，应离心收集悬浮细胞并放回原瓶

l 冻存细胞

1. 细胞收货后尽快开箱检查，若干冰充足可以取出细胞迅速置于-80℃冰箱（2-3天内复苏）短期保存或液氮中长*保存，若干冰完*挥发建议立即复苏细胞并联系销售人员解决；

2. 冻存细胞建议尽快复苏一管培养检查，以免超出售后期，复苏步骤参考复苏攻略；

3. 复苏一管细胞出现异常及时联系销售人员，在业技术支持的指导下进行下一步操作；

Tips：

1. 细胞收货出现漏液、培养瓶破损、干冰完*挥发等异常情况时，及时拍照联系销售人员；

2. PG电子代理生物T25瓶发货的细胞内含对应细胞的完*培养基，可以收集原装培养瓶内培养基经1500rpm离心5min后，取上清于4℃保存用于后续细胞培养；

常见问题及解决方案

细胞密度怎么计算的？

严格意义上，细胞密度需要收集细胞悬液计数细胞数量，但在实际培养过程中，并不需要为了精*控制细胞数量而计数。因此，常用的细胞密度指细胞相对于*生长密度的比值，贴壁细胞可以粗略的用细胞所占培养容器底面积百分比表示，即显微镜下观察培养容器底部，有细胞的区域占总区域的百分比值，当然这种表达方式受限于单个细胞生长不同密度时所占面积不同导致并不严谨，但也是相当直观、简便的表现细胞状态的一种方式。

NO.2培养过程中细胞碎片较多怎么处理？

1. 细胞内的黑色颗粒是细胞外分泌泡及细胞器折光，这个属于细胞自身特性，无法清除也无法改变，大部分细胞都会有这种现象，只是不同细胞颗粒多少有区别，细胞培养体系不适应、营养缺乏、渗透压异常等均可能导致细胞内颗粒增加，建议使用合适的培养条件。

2. 细胞外的黑色颗粒大部分是细胞碎片和细胞代谢产物，可以先吸走培养基后用PBS润洗清除，再加新的培养基继续培养。润洗不能清除的可以换液清洗后等细胞密度70-80%左右消化处理细胞，消化完成后加完*培养基终止消化，混匀细胞，收集细胞悬液900-1000rpm(约150g)离心3min，弃上清。再加5mL PBS重悬细胞，再离心后，用完*培养基重悬接种到新的培养皿。第二次PBS重悬是为了去除碎片，如果平时碎片比较少，传代时可以省略PBS重悬的步骤；如果碎片很多，建议PBS多洗几次。

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